יום שלישי, 20 במרץ 2012

להפיץ חיידקים ויתושים - ולמנוע קדחת - יונת אשחר ונעם לויתן

 

מניעת קדחת דנגי בעזרת יתושים המודבקים בחיידקים שעוצרים את נגיף הקדחת

בשבוע הראשון של ינואר 2012 הגיעה קבוצת חוקרים, בראשותו של סקוט אוניל (O’neill) מאוניברסיטת מונש במלבורן, לשתי ערים בחוף המערבי של אוסטרליה. שם הם שחררו כמה אלפי יתושים, בניסוי שנועד להילחם באחת המחלות הטרופיות הקשות ביותר – קדחת דֶנגי.

כ-50 מיליון איש בשנה, ביותר מ-100 מדינות, חולים במחלה הגורמת לחום וכאבים ובמקרים מסוימים עלולה גם להסתיים במוות. המחלה נגרמת על ידי נגיף שמועבר לבני-אדם בעיקר על ידי יתוש ממין מסוים – אדס מצרי (Aedes aegypti). למחלה אין תרופה או חיסון, ומאמצי רשויות הבריאות מתרכזים בניסיון לצמצם את אוכלוסיית היתושים – ניסיון שבמרבית המקרים אינו מוצלח במיוחד, ובעשורים האחרונים הטווח הגיאוגרפי של המחלה אפילו גדל. שחרור של יתושים נוספים אולי נשמע כרעיון לא מוצלח במיוחד ללחימה במחלה המועברת על ידי יתושים, אבל היתושים ששוחררו בערי החוף הכילו נשק סודי בתוך גופם – חיידק מסוג Wolbachia.


יתושת אדס מצרי (Aedes aegypti) בזמן ארוחה. צילום: James Gathany, CDC.


במאמר שפרסמו ב-2011 במגזין Nature, הראו החוקרים כי הדבקה בחיידק זה מקנה ליתוש עמידות בפני הנגיף הגורם לקדחת דנגי. לא לחלוטין ברור כיצד זה קורה. מחקרים הראו כי החיידק גורם להפעלה של מערכת החיסון של היתוש וייתכן שזה מה שמונע את ההדבקה בנגיף – אם כי ככל הנראה ישנם גם גורמים אחרים המעורבים בכך.

יתושה הנושאת את החיידק מעבירה אותו לצאצאיה, תכונה העוזרת לחיידק להתפשט באוכלוסייה – כל הצאצאים של הנקבות המודבקות נושאים את החיידק. לעומת זאת, כאשר זכר הנושא את החיידק מפרה נקבה שאינה נושאת אותו, העובּרים מתים. כך, חלק מהנקבות הלא מודבקות מאבדות את עובריהן ולא מתרבות.

במאמר נוסף, שפורסם במקביל במגזין Nature, מדווחים החוקרים על ניסוי שנערך בינואר 2011, בו הם שחררו אלפי יתושים מודבקים במשך כתשעה שבועות בשני אתרים שונים, בסך הכול כ-150,000 יתושים, זכרים ונקבות, בכל אתר. בדיקות שנערכו כמה שבועות לאחר מכן הראו כי החיידק התפשט לכ-90% מהאוכלוסייה. מכיוון שמטרת הניסוי היתה לבדוק האם החיידק יכול להתפשט באוכלוסיית בר של היתוש, החוקרים בחרו בזן שמתפשט במהירות, ולאו דוקא בזן שחוסם את הנגיף בצורה הטובה ביותר. בניסוי החדש, שהתחיל ב-2012, משתמשים החוקרים בזן של החיידק שחוסם את הדבקת היתושים בנגיף באופן מלא.

המבחן האמיתי לשימוש בחיידקי Wolbachia הוא: האם הם מסוגלים להוריד את שכיחות קדחת הדנגי באזור – לא רק את ההדבקה של היתושים, אלא גם את זו של בני האדם? האתרים שבהם נערך הניסוי בשנה שעברה, כמו אלו שבהם הוא נערך כיום, קטנים מדי ואחוזי ההדבקה בהם נמוכים מכדי שאפשר יהיה לזהות אפקט בעל מובהקות סטטיסטית. החוקרים מצפים כי בשנים הקרובות הם יוכלו להתחיל בניסויים במקומות שבהם מקרי ההדבקה נפוצים יותר, שם הם מקווים להראות את יעילות השיטה של הפצת יתושים מודבקים. אם בניסויים אלו יתקבלו תוצאות חיוביות, הם עשויים להוביל לפריצת דרך בניסיונות למנוע את התפשטותה של קדחת דנגי.

לקריאה נוספת

המאמרים המקוריים:

Walker, T. et al. The wMel Wolbachia strain blocks dengue and invades caged Aedes aegypti populations. Nature 476, 450–453 (2011). doi:10.1038/nature10355 (PDF).

Hoffmann, A. A. et al. Successful establishment of Wolbachia in Aedes populations to suppress dengue transmission. Nature 476, 454-457 (2011). doi: 10.1038/nature10356 (PDF).

ידיעה ב-Nature News על הניסויים.

דרור בר-ניר, Wolbachia - מאֶנדוסימביוזה הדדית להתהוות מינים חדשים, "גליליאו" 127.

דרור בר-ניר, "חיידקים נגד זכרים", "גליליאו" 94.


פורסם ב"גליליאו" 163, מרץ 2012


יום חמישי, 15 במרץ 2012

תחליפים לניסויים בשימפנזים - ירון כספי

 

מחקר מדעי וזכויות הקופים: מי יגן על רווחת השימפנזים? המכון הלאומי לבריאות בארצות־הברית מנסה למצוא פתרון לסוגיה

בין הבעיות המוסריות הקשורות במדע, בעיית הניסויים בבעלי חיים היא ללא ספק אחת החשובות והסבוכות ביותר. התומכים בניסויים אלה באופן כולל טוענים כי הם הכרחיים לקידום הידע האנושי והמחקר המדעי, ובמיוחד ליכולתה של הרפואה המודרנית להמשיך ולשפר את איכות חיינו. המתנגדים לניסויים באופן כולל טוענים שאין זה משנה מה היא התועלת למין האנושי או למחקר המדעי, הניסויים אינם מוסריים, שכן הם פוגעים ביצורים שחשים כאב. 

בין שתי תפישות קוטביות אלו אפשר למצוא את כל קשת הדעות. מקרב בעלי החיים, ניסויים בקופים, ובמיוחד בקופי אדם, מעוררים את הקושי הגדול ביותר. העובדה שהם דומים לנו כל כך מבחינה ביולוגית, קוגניטיבית וחברתית מקשה על היכולת להצדיק את הניסויים המדעיים בהם. מצד שני, אותה עובדה מאפשרת להשתמש בהם כדי להסיק מסקנות מדעיות ישירות (או באופן הקרוב ביותר לכך) לגבי בני אדם, לפתח תרופות שיהיו בטוחות לבני אנוש ולחקור מחלות אנושיות. 


שימפנזים ביער Kibale - אוגנדה
Charles J. Sharp, Wikimedia commons


ב־2010 החליט המכון הלאומי לבריאות של ארצות־הברית (NIH - National Institute of Health) לממן את העברתם של 200 שימפנזים ב׳פנסיה׳ ממרכז מחקר בניו־מקסיקו למרכז מחקר בטקסס, דבר שהעלה חשש כי הם יאלצו לחזור ולשמש כ״שפני ניסוי״. הסערה הציבורית שקמה בעקבות כך, והעובדה שבדיוק באותו זמן אסר הפרלמנט של האיחוד האירופי להמשיך בניסויים בקופי־אדם, הובילה את ה-NIH להקים ועדה שתייעץ לו לגבי המדיניות העתידית בניסויים בשימפנזים. יש לציין שה-NIH מממן מחקר בכשני שליש מהשימפנזים המוחזקים למטרות מחקר בארצות־הברית (612 מתוך 937), בעוד שאת השליש הנותר מממנים גופים פרטיים. בסך הכול מוחזקים השימפנזים שמממן ה-NIH בארבעה מרכזים ברחבי ארצות־הברית. 

למרות שבראש הוועדה עמד פרופ׳ ג׳פרי קאהן (Kahn), ביואתיקאי מאוניברסיטת ג׳ון הופקינס, הוועדה לא התבקשה לעסוק בשיקולים מוסריים, אלא רק להמליץ על קווים שינחו את המדיניות העתידית בנושא. הוועדה התכנסה פעמיים, ערכה סקר של הספרות המדעית וביקשה תגובות מהציבור (ואף קיבלה למעלה מ־5,700 תגובות). בחודש שעבר היא הגישה את הדוח הסופי שלה, שבו קבעה כי למרות ששימפנזים שימשו בעבר כחיות למחקר ביו־רפואי, התפתחויות מדעיות הובילו לפיתוחן של שיטות מחקר חליפיות, שהופכות את רוב הניסויים בשימפנזים לבלתי הכרחיים. עם זאת לא המליצה הוועדה להפסיק כליל את הניסויים בשימפנזים ואף המליצה להמשיך ולממן מחקרים שכבר החלו כדי לא לעכב פיתוח תרופות חדשות.

לפי הדוח, בין השנים 2010-2001 מימן ה-NIH כ־50-40 מחקרים בשנה בשימפנזים (ובסה״כ 110 ניסויים שונים לאורך התקופה). הקבוצה הגדולה יותר של המחקרים עסקו בהפטיטיס (צהבת, דלקת כבד נגיפית) מסוגים B ו־C (כ־40%). תחומי המחקר העיקריים הנוספים היו נוירוביולוגיה, איידס, מחקר התנהגותי ומחקר גנומי משווה. הוועדה המליצה על קריטריונים שישמשו לבחינת הנחיצות המדעית של כל מחקר ומחקר באופן פרטני. בנוגע למחקרים ביו־רפואיים המליצה הוועדה שרק ניסויים העומדים בשלושת הקריטריונים הבאים יקבלו מימון מה־NIH: א. הידע שיתקבל מהניסוי הכרחי למניעת עיכוב פיתוחם של אמצעים רפואיים חדשים כנגד גורמים מסכני חיים אנושיים או כאלה המחלישים את העמידות הרפואית האנושית. ב. לא קיימות מערכות אחרות שבהם אפשר לערוך את המחקר, ואי אפשר לבצע אותו על בני אדם, מסיבות אתיות. ג. השימפנזים יוחזקו בסביבה מתאימה מבחינה פיזית וחברתית (כמו למשל בכלובים מיוחדים המשמשים להחזקת קופי־אדם, כלובים המכונים Primadomes), או שיימצאו בסביבתם הטבעית. 

כדוגמה לשימוש בקריטריונים אלה בחנה הוועדה את המחקרים בנושא דלקת כבד נגיפית מסוג C. הוועדה המליצה להפסיק את הניסויים בשימפנזים למטרת פיתוח חיסון טיפולי למחלה זו. הוועדה הכירה בצורך הרפואי בפיתוח חיסון זה ובעובדה שאין בעלי חיים אחרים שבהם אפשר להשתמש כדי לבדוק את יעילותו. ואולם, מכיוון שאפשר לבחון את החיסון בעזרת מתנדבים אנושיים החולים במחלה על ידי חשיפתם לכמויות זעירות לאחר שהתרכיב עצמו נבדק על בעלי חיים אחרים ונמצא כי אינו רעיל, הרי שניסויים אלה אינם עומדים בקריטריון השני אותו הציעה הוועדה. לעומת זאת, לגבי השימוש בשימפנזים לשם פיתוח חיסון מונע לדלקת כבד נגיפית C, לא הצליחה הוועדה להגיע להמלצה מוסכמת. בשונה מחיסון טיפולי, חיסון מונע יכול להיבחן רק על אוכלוסיות אנושיות ברמת סיכון גבוהה, אך לא כאלה שכבר חלו במחלה. לפיכך, קיימת סכנה שהפסקת השימוש בשימפנזים תעכב את פיתוח החיסון. פרק מיוחד הקדישה הוועדה לבחינת מחקרים התנהגותיים ומחקרי גנום משווה. בנוגע למחקרים אלה המליצה הוועדה לממנם רק אם הם עומדים בקריטריונים הבאים: א. המחקרים מספקים ידע מדעי שאי אפשר להשיגו בדרך אחרת בנושאים כגון תודעה, בריאות נפשית, רגשות או התפתחות הגנום האנושי. ב. המחקרים מבוצעים על שימפנזים שאינם מתנגדים, ושנותנים את הסכמתם בשתיקה למחקר. כמו כן, עליהם להתבצע כך שימזערו את הכאב והעקה שחשים השימפנזים כמו גם את השימוש בשיטות פולשניות. ראש הוועדה טוען שהקריטריונים החדשים מציבים רף גבוה מאוד, שיוביל להפסקת מרבית הניסויים בשימפנזים. מנגד, נשמעו קולות הטוענים כי המלצות הוועדה הם למעשה רק אשרור מחדש למדיניות הנהוגה כיום. עקב הדוח הודיע ה-NIH כי יפסיק באופן זמני את התמיכה במחקרים חדשים העושים שימוש בשימפנזים לניסויים.


לקריאה נוספת:

תקציר הדו׳׳ח והמצגת המסכמת של הוועדה.


פורסם בגליליאו 163, מרץ 2012


יום שלישי, 13 במרץ 2012

חיידקים במגננה - ירון כספי


חיידקים, שלעתים גורמים לנו לחלות, יכולים בעצמם לחלות ואף למות – זאת כשתוקפים אותם נגיפים מיוחדים – ונפוצים ביותר – בקטריופגים ("זוללי חיידקים"). מתברר כי לחיידקים יש מנגנוני הגנה מתוחכמים נגד אויבים זעירים אלה, ושלהם משמעות גם לגבי בריאות האדם

חיידקים (ארגמניים)
Helis paas, Wikimedia commons

בין השנים 1884 ו-1890 הגדיר רוברט קוך (Koch), הרופא שהיה למיקרוביולוג נודע, ארבעה קווים מנחים המאפשרים לקבוע כי מחלה זיהומית נגרמת על ידי מיקרואורגניזם ספציפי. היה זה סיכומו של אחד הפרקים המרתקים בתולדות הרפואה המודרנית, שהוביל לפיתוחן של פרקטיקות רפואיות אנטי-מחלתיות חדשות, ועקב כך לעלייה משמעותית בתוחלת ובאיכות החיים של המין האנושי. ואולם כמה שנים לאחר שהתקבלה הקביעה כי יצורים מיקרוסקופיים, ובעיקר חיידקים, אחראים למחלות זיהומיות, התברר כי יש גורמי מחלות נוספים הקטנים מהחיידקים הזעירים ביותר, ושאי אפשר לזהותם כגורמי מחלה בעזרת הקווים המנחים של קוך. היה זה האות ליסודו של תחום מדעי חדש - הווירולוגיה - העוסקת בחקר הנגיפים (וירוסים).

כיום אנו מורגלים כל כך להבחנה בין נגיפים לחיידקים עד שאין מי שאינו יודע כי מחלות חיידקיות אפשר לרפא עם אנטיביוטיקה, בעוד שלמחלות נגיפיות כמעט שאין תרופה. הסיבה לכך היא שנגיפים, שלא כמו חיידקים, אינם יכולים לייצר באופן עצמאי את המולקולות האורגניות הדרושות להתרבותם, ולכן קשה למצוא חומרים כימיים שיתקפו ספציפית אותם מבלי לפגוע בגופנו. למעשה, נגיפים הם בסך הכול פיסות של חומצות גרעין (DNA או RNA), המכילות הוראות כיצד ליצור נגיף חדש, ועטופות במעטפת המשמשת למטרות הגנה ולמטרות מסייעות נוספות. כדי להתרבות עושה הנגיף שימוש במנגנונים ביולוגיים של התא המותקף ומייצר בעזרתם את הרכיבים הדרושים ליצירת נגיפים חדשים.


לחיידקים מגוון צורות. יש חיידקים עגולים, מאורכים, חיידקים בצורה מעוקלת הדומה לפסיק, חיידקים בצורת סליל (ספירלה) וצורות רבות אחרות. פעמים רבות שְמו של החיידק מעיד על צורתו, כך למשל, סטרפטוקוקוס פנאומוניה, שגורם לדלקת ריאות, הוא בעל צורה עגולה, כפי שמעיד עליו שמו - קוקוס, מהמילה היוונית kokkos - שמשמעותו גרגיר או גרעין.

נגיפים של חיידקים
מתברר, שנגיפים תוקפים לא רק אנשים, בעלי חיים וצמחים, אלא את כל סוגי היצורים החיים בטבע. נגיפים הקרויים בקטריופגים (bacteriophage), או בקיצור פאג'ים, תוקפים חיידקים והם אחד האיומים הבריאותיים הגדולים ביותר על חייהם. את החיידק המיועד לתקיפה מזהה הפאג' על פי חלבונים ספציפיים, הממוקמים על מעטפת החיידק המותקף ומכונים קולטנים (איור 1). לאחר שנצמד הפאג' לחלבונים אלה הוא מזריק את החומר הגנטי שלו לתוך החיידק. על פי ההוראות שבחומר גנטי זה ובעזרת מנגנוני ייצור החלבונים של החיידק, מיוצרים חלבונים נגיפיים, שמשתתפים בשכפול החומר הגנטי הנגיפי ובייצורם של חלבונים נוספים הדרושים לנגיף. לבסוף, מורכבים הנגיפים החדשים בתהליך המכונה הרכבה ספונטנית, המוביל לפיצוץ המעטפת של החיידק ולשחרורם לסביבה של נגיפים חדשים (זהו מחזור ליטי; מלשון ליזיס, פירוק). T4, אחד הבקטריופגים הקטלניים ביותר לחיידקים שנחקרו, משתק באופן כמעט מיידי את ייצורם של החלבונים החיידקיים ותוך כ-12 דקות יוצר כ-100 נגיפים חדשים. מעניין כי לפאג'ים אחרים אפשרות 'להחליט' לפעול אחרת ולא להרוג את החיידק. במקרה זה, במקום לייצר נגיפים חדשים, עובר ה-DNA של הפאג' אינטגרציה לתוך הכרומוזום של החיידק ונשאר שם במצב רדום עד לזמן מאוחר יותר, שבו 'יחליט' לצאת מהכרומוזום ולהתחיל לייצר נגיפים חדשים. במצב כזה מכונה הפאג' הכלול בכרומוזום החיידקי – פרופאג'. על פי ההערכות, הפאג'ים נפוצים כל כך בטבע עד שאין אף צורה ביולוגית אחרת שקרובה להשתוות אליהם מבחינה מספרית.

איור 1: מחזור חיים של פאג'. בשלב הראשון הפאג' מזהה קולטן הנמצא על גבי המעטפת של החיידק ונצמד אליו. בשלב השני מזריק הפאג' את ה-DNA שלו לתוך החיידק. בשלב השלישי משוכפל ה-DNA של הפאג' ומיוצרים חלבוני המעטפת של הפאג' על ידי מנגנוני שכפול
ה-DNA וייצור החלבונים של החיידק. בשלב האחרון מיוצרים פאג'ים חדשים בתהליך המכונה "הרכבה ספונטנית" שאינו מצריך אנרגיה. עקב כך המעטפת של החיידק מתפוצצת, והפאג'ים החדשים משתחררים ומוכנים להתחיל את מחזור החיים מהתחלה (מחזור ליטי).

מבחינה אקולוגית אפשר לתאר את היחסים בין החיידקים לפאג'ים כמערכת קלאסית של טורף (הנגיפים) ונטרף (החיידקים). יחסי גומלין אלה מובילים ליצירת מנגנוני הגנה אצל הנטרף, שבעזרתם הוא מנסה להתחמק מהתקפותיו של הטורף. החיידקים, שאינם שונים מבחינה זו מכל נטרף אחר, פיתחו כמה מנגנונים כאלה; הפאג'ים פיתחו מנגנונים כדי להתגבר על מערכות ההגנה של החיידקים; החיידקים פיתחו מנגנונים כדי להתגבר על המנגנונים החדשים של הפאג'ים וחוזר חלילה. כך נוצר מרוץ חימוש בין הטורפים לנטרפים.

אחת הדוגמאות היפות לכך הוא ניסיונם של החיידקים להסוות עצמם מפני הפאג'ים. כאמור, הפאג'ים מזהים את החיידקים בעזרת חלבונֵי המעטפת של החיידקים. כדי להסוות את עצמם מייצרים חיידקים מסוימים מערכת חלופית של חלבוני מעטפת. כך למשל, חיידק השעלת יכול להופיע בשני מופעים: (+) ו-(-). ההבדל ביניהם הוא שבמופע ה-(+) מופיעה מערכת של חלבונים על גבי החיידק, שאינם קיימים במופע ה-(-). אחד מאותם החלבונים הוא הקולטן שאליו נצמדים הפאג'ים. לכן החיידקים במופע ה=(-) עמידים פי מיליון להתקפה של פאג'ים מאשר אלה במופע (+). למעשה, מערכת החלבונים הקיימת בחיידק מופע ה-(+) היא שמאפשרת לו להיות פתוגני ולגרום למחלת השעלת. כלומר, החיידק במופע (+) הרוויח את היכולת לנצל את הגוף שלנו אך תוך כדי כך חשף את עצמו למתקפת הפאג'ים.

רוב החיידקים הם קטנים. גודלם לרוב הוא כמה מיקרומטרים. ואולם יש חיידקים ענקיים שיכולים להגיע לגודל של כמה מאות מיקרומטרים, כך שאפשר לראות אותם בעין בלתי מצוידת. החיידק הגדול ביותר המוכּר מגיע לאורך של 0.75 מ"מ (Titanospirillum namibiensis).

דרך אחרת בה משתמשים חיידקים כדי למנוע היקשרות הפאג'ים אליהם היא חסימת הקולטנים. חיידקים מסוימים מייצרים חלבונים המתחברים לקולטן ומונעים באופן פיזי את אפשרות היצמדות הפאג' לחיידק. דרך נוספת להשגת המטרה היא ייצור של שרשרות סוכריות ארוכות על פני החיידק. שרשרות אלו יוצרות הפרעה מרחבית המוֹנעת מהפאג'ים גישה לקולטנים, אך מאפשרות גישה למולקולות קטנות, ולכן שומרות על תפקוד הקולטנים. הפאג'ים לא נשארו חייבים: אצל חלק מהם התפתחו אנזימים מיוחדים על המעטפת, שמפרקים את שרשרות הסוכריות ופותחים גישה מחודשת לקולטנים. פאג'ים אחרים פיתחו אסטרטגיה חלופית: במקום להרוס את שרשרות הסוכריות הם משתמשים בהן כקולטנים חלופיים, נצמדים אליהן ונעזרים בהן לשם הזרקת ה-DNA...

גם לאחר שהזריק הנגיף את החומר התורשתי שלו לחיידק משימתו טרם הושלמה. אצל כרבע מהחיידקים קיים קו הגנה שני, בצורת אנזימי חיתוך, שמזהים רצף מסוים של DNA וחותכים אותו. אנזימים נוספים מזהים DNA חתוך ומפרקים אותו. בצורה זו נפטר החיידק מ-DNA זר שחודר אליו. אלא שהמשימה אינה פשוטה, זאת מכיוון שגם לאורך ה-DNA של החיידק ייתכן שיימצאו אותם רצפים, והחיידק רוצה כמובן לשמור על ה-DNA שלו שלם. כדי להתגבר על בעיה זו מסמן החיידק את ה-DNA העצמי שלו בקבוצות מֶתיל (CH3), כך שמצד אחד החלבונים ההכרחיים לתפקודו, כמו אלה האחראים לשכפול ה-DNA וגורמי התעתוק שלו, נשארים פעילים, בעוד שאנזימי החיתוך – שאינם חותכים DNA מסומן בקבוצות מֶתיל – אינם גורמים לו נזק.

אצל חלק מהחיידקים קיים מנגנון נוסף המכונה שכפול כושל. במקרה כזה, לאחר שהפאג' החדיר את ה-DNA שלו והתחיל לייצר את החלבונים הדרושים לו, מזהה החיידק את התקיפה ומפעיל מנגנון המוביל להתאבדות החיידק. המקרה הנחקר ביותר של שכפול כושל מבוסס על חלבונים הנצמדים ל-DNA הנגיפי וגורמים עקב היצמדותם לשפעולה של תעלה יונית הנמצאת על מעטפת החיידק. שפעול זה מוביל להקטנת המתח החשמלי בין פְּנים התא לסביבתו ומונֵע את ייצור המולקולות נושאות האנרגיה הכימית של התא (ATP). כתוצאה מכך החיידק מת, הפאג' מאבד את האפשרות להתרבות וייצורם של נגיפים נוספים נפסק. כך מציל החיידק המותקף את חייהם של בני מינו על חשבון הישרדותו שלו. התנהגות זו מעלה כמובן שאלות פילוסופיות על מקומה של האלטרואיסטיות בטבע, ועל הרמה – רמת הגנים, רמת הפרט או רמת המין-הביולוגי – שבה פועלת האבולוציה.

מתברר, שנגיפים תוקפים לא רק אנשים, בעלי חיים וצמחים, אלא את כל סוגי היצורים החיים בטבע. נגיפים הקרויים בקטריופגים (bacteriophage), או בקיצור פאג'ים, תוקפים חיידקים והם אחד האיומים הבריאותיים הגדולים ביותר על חייהם.

קריספר – המערכת החיסונית הנרכשת של החיידקים
למרות שמנגנוני ההגנה שהוזכרו הם מנגנונים יעילים, המאפשרים לחיידקים לשרוד את ניסיונות התקיפה של הפאג'ים, הם חסרים את אחת התכונות היעילות ביותר במניעת התקפה על ידי גורם זר - היכולת לזכור מיהו האויב. בצורה מסוימת המנגנונים שהוזכרו דומים למערכת החיסונית המולדת של בעלי החיים. כשבעל חיים מזהה פלישה של גורם זר הוא מגייס בשלב הראשון תאים מיוחדים, שתפקידם לזהות תאים נגועים ולהרוג אותם. בצורה זו מקריב הגוף מספר קטן של תאים למען בריאותו הכללית. כיום מאמינים המדענים כי המערכת החיסונית המולדת התפתחה בשלב מוקדם מבחינה אבולוציונית, ורק בשלב מאוחר יותר התפתחה אצל בעלי החיים המערכת החיסונית הנרכשת, שפועלת בעזרת נוגדנים: כשבעל חיים נחשף לגורם פולש הוא מפעיל תכנית גנטית, שמטרתה לייצר חלבון חדש - הנוגדן - שלא היה קיים קודם בגוף ושמזהה את הגורם הפולש באופן ספציפי. בפעמים הבאות שיותקף הגוף על ידי אותו פולש כבר יהיה בידו נשק מיוחד כנגד הפולש, שיכול לכוון את תאי המערכת החיסונית ישירות נגדו. זהו כמובן המנגנון שעליו מתבססים החיסונים – תחילה חושפים את הגוף לחיידק או לנגיף מוחלש או מומת, אז מפתח הגוף נוגדנים נגדם, וכך כשהוא נחשף למקור המחלה הוא כבר מוגן. המפתיע הוא שהחיידקים פיתחו מערכת מקבילה, מתוחכמת לא פחות, שמטרתה ללמוד מהניסיון. מערכת זו מכונה קריספר -CRISPR - clustered regularly interspaced short palindromic repeats, או בעברית: חזרות קטעי פָּלִינְדְּרוֹם (פלינדרום הוא רצף של סימנים שיכול להיקרא באותה צורה משמאל לימין או מימין לשמאל, כמו אמא או אבא.) קצרים מקובצים. על פי ההערכות מערכת זו קיימת בקרב כ=40% ממיני החיידקים.

לפאג'ים השפעה ניכרת על התפוצה של חיידקים שונים. הערכות שונות גורסות שבין 20% ל=40% מהחיידקים החיים בים מתים מדי יום עקב התקפות של פאג'ים (יש מי שמטיל ספק בהערכות אלה). מודלים אקולוגים מסוימים מציעים כי פאג'ים תוקפים את החיידקים הנפוצים יותר מאת אלה הנפוצים פחות. בכך הם תורמים תרומה נכבדת לשמירת המגוון הביולוגי של החיידקים. אף שהדבר אינו ודאי, נראה כי האינטראקציה בין הפאג' לחיידק יוצרת לחץ אבולוציוני על החיידקים להקטין את גודלם. 

סיפור גילויה של מערכת הקריספר מעיד על המהפך העובר על הביולוגיה העכשווית ועל החשיבות ההולכת וגוברת של שיטות חישוביות לגילוי מנגנונים ביולוגיים חדשים. בשנת 1987 זיהו חוקרים מאוניברסיטת אוסקה ביפן קבוצה של רצפים קצרים החוזרים על עצמם ברצף ה-DNA של החיידק E. coli. במהלך שנות התשעים של המאה שעברה התגלו רצפים דומים ב-DNA של חיידקים רבים נוספים. בין השנים 2002-2000 איחדו חוקרים ספרדים והולנדים את הידע על רצפים אלה מחיידקים שונים וטבעו את המונח קריספר. מכיוון שפעמים רבות בחיידקים גֶנים הקשורים תפקודית שוכנים בסמיכות על רצף ה-DNA, אִפיינו החוקרים גם את האזורים הסמוכים לרצפים החוזרים, וגילו משפחה שלמה של חלבונים המכונה קאס (cas, CRISPR-associated-genes). ואולם אף שהיה ברור שלאתר זה על רצף ה-DNA יש תפקיד, לא היה ברור מהו.

הפתרון הופיע מכיוון לא צפוי: משנות השמונים של המאה הקודמת חלה קפיצת דרך ביכולות לפענח את רצף ה-DNA. בשנת 1984 פוענח לראשונה הרצף השלם של נגיף, ובשנת 1995 פוענח לראשונה הרצף של חיידק שלם. במאגרי המידע החלו להצטבר עוד ועוד רצפים מפוענחים. בשנת 2005, בהסתמך על מאגרי מידע אלה ובעזרת שיטות של ביולוגיה חישובית, גילו שלוש קבוצות מחקר שונות שהרצפים הנמצאים בין הרצפים החוזרים מתאימים במקרים רבים לרצפים מקבילים של פאג'ים, של פרופאג'ים או של אלמנטים גנטים הנודדים בין חיידק לחיידק (אלמנטים גנטיים הנודדים מחיידק לחיידק הם פיסות DNA שעוברות בין הכרומוזומים של חיידקים באופן שאינו תלוי בשכפול הכרומוזום עצמו.). מכאן הסיקו החוקרים כי מערכת הקריספר משמשת כמנגנון הגנה בפני פאג'ים, מסקנה שהתחזקה כשהתברר שחיידקים שהיו בעלי הרצף מתאים לפאג' מסוים היו עמידים, בין היתר, לסוג זה של הפאג'. רק בשנת 2007 התקבל אישוש ניסויי לתיאוריה, כשהתברר שאם בוררים חיידקים שמשמשים ליצירת יוגורט כך שיהיו עמידים לפאג'ים מסוימים, הם רוכשים רצף חדש באתר הקריספר שלהם, שזהה לרצף של הפאג' כלפיו הפכו חסינים. יתר על כן, אם מוסיפים רצף מתאים מתוך פאג' לאתר הקריספר של חיידק בעזרת הנדסה גנטית, הוא הופך חסין לפאג'!

התמונה שהתקבלה היא, אם כן, שמערכת הקריספר-קאס היא מערכת חיסונית נרכשת, בדומה למערכת החיסונית הנרכשת שלנו, והיא משמשת את החיידקים כמנגנון עמידות כנגד פאג'ים. כדי להבין כיצד היא פועלת יש לתאר את המבנה שלה.

תרפיית פאג'ים היא רעיון שעל פיו אפשר להשתמש בפאג'ים ההורגים חיידקים כטיפול אלטרנטיבי לאנטיביוטיקה, בבחינת האויב של אויבי הוא חברי. לצורת טיפול כזו יתרונות רבים: למשל, פאג'ים יכולים לתקוף זנים ספציפיים של חיידקים ולהרוג את גורמי המחלה בלי לפגוע בחיידקים הטובים שבגופנו. חיידקים, כמובן, מפתחים עמידות לפאג'ים, אך אפשר, בקלות יחסית, להתגבר על עמידות זו על ידי ברירה במעבדה של פאג'ים חדשים. אף שהרעיון הוא כבר כמעט בן 100 שנה, הוא כמעט ואינו בשימוש. אחת הסיבות היא שבאחוז מסוים מהחולים המערכת החיסונית מזהה את הפאג' עצמו כפולש, ומפעילה את מערכת החיסון נגדו.

המבנה של מערכת קריספר-קאס
אתר הקריספר בנוי מרצפים קצרים החוזרים אחד אחרי השני, וביניהם ממוקמים רצפים ייחודיים המכונים מרווחים (איור 2). האורך הממוצע של היחידות החוזרות ושל המרווחים הוא עשרות נוקליאוטידים. בסמוך למערך האזורים החוזרים (ולפניו), ממוקם רצף נוסף המכונה הרצף המוביל (leading sequence), שאינו מקודד יצירה של חלבון. משני צדי האתר נמצאים חלבוני הקאס, שמחולקים לשלוש קבוצות: קבוצה של חלבונים השמורים בין חיידקים שונים, קבוצה של חלבונים שאינם שמורים בכל החיידקים, וקבוצה שלישית המכונה "חלבונים מסתוריים הקשורים לרצפים חוזרים".

איור 2: מבנה אתר הקריספר-קאס. דוגמה למבנה אתר קריספר-קאס של החיידק E. coli. באתר מקודדים שמונה חלבונים, חמישה מתוכם מרכיבים את הקאסקיד, שאחראי על עיבוד ה-RNA המתועתק. שלושת החלבונים האחרים משתתפים בפעולות אחרות הדרושות לשם תפקוד המערכת החיסונית של החיידק. ברצף ה-DNA נמצאים לאחר החלבונים הרצף המוביל, ואחריו הרצפים החוזרים והמרווחים.

המבנה של אתר קריספר אינו אקראי. חשיפה לפאג' חדש מובילה להוספת הרצף החוזר והמרווח המתאים תמיד בצד הסמוך לרצף המוביל. כך, הסדר על אתר קריספר מכיל בתוכו למעשה את ההיסטוריה של ההתקפות הנגיפיות על החיידק ועל אבותיו. ואולם אם לוקחים בחשבון את תדירות התקפותיהם של הפאג'ים, מוביל מנגנון זה בהכרח לגידול מסיבי באורך הדנ"א של החיידק, וליצירת עומס חסר תועלת בשכפול DNA מיותר. לפיכך התפתח בחיידקים מנגנון נוסף, שאחראי על מחיקת רצפים ישנים מאתר הקריספר (ממש כמו ביישומי מחשב מסוימים, בהם קבצים חדשים דורסים את הקבצים הישנים).

בנוסף להגדרת הכיווניות של אתר הקריספר, אחראי הרצף המוביל על עצם יכולתה של המערכת החיסונית לתפקד. עדות לכך אפשר למצוא בחיידקים שבהם אתרי הקריספר חסרים את הרצף המוביל. אתרים כאלה הם אתרים מתים – הם אינם מבצעים אינטגרציה של מרווחים חדשים ואינם מעניקים לחיידק הגנה חיסונית חדשה.

מעניין לציין כי לחלק מהחיידקים אתר קריספר יחיד, אך אין זה נדיר למצוא חיידקים בעלי מספר אתרי קריספר שונים. ניתוח השוואתי של אתרים אלה העלה כי הקשר בין רצפים חוזרים או בין רצפים מובילים של חיידקים שונים הוא די קלוש. לעומת זאת, כשלחיידק אחד יש כמה אתרים שונים על הכרומוזום שלו, יכילו אלה בדרך כלל רצפים חוזרים ורצפים מובילים בעלי רצף דומה. המשמעות היא שהמנגנון החיסוני של החיידקים הוא מנגנון גמיש, שאינו תלוי בצורה הדוקה ברצפים ספציפיים של DNA ופועל על סמך עקרונות כלליים יותר. כדי להבין כיצד עקרונות אלה באים לידי ביטוי, יש להבין כיצד המרווחים והרצפים החוזרים מעניקים לחיידק את חסינותו.

חיידקים מבצעים התאבדות מסיבות שונות: לדוגמה, בחיידק Staphylococcus aureus קיים גֶן המוביל את החיידק להרג עצמי ושחרור ה-DNA שלו לסביבה. DNA זה משמש כדבק העוזר לחיידקים האחרים ליצור קרום ביולוגי (biofilm), מבנה המורכב מחיידקים רבים שיוצרים מבנה 'רב תאי' אחד. מבנה זה תורם לשרידותם של החיידקים ששוכנים בו, שכן הוא מקטין את הסיכוי שייטרפו על ידי מיקרואורגניזמים ומגביר את יכולתם  להתגבר על חומרים אנטיביוטיים הנמצאים בסביבה.

המנגנון החיסוני של מערכת הקריספר
כדי להעניק חסינות כנגד פאג', צריכה מערכת הקריספר לבצע שלוש מטלות: תחילה עליה לזהות התקפה של נגיף ולהכניס רצף מסוים מה-DNA שלו לתוך ה-DNA של החיידק; בשלב השני צריכה המערכת להפעיל את המנגנון החיסוני בעקבות תקיפה מחודשת של הפאג'; ובשלב השלישי היא צריכה לנטרל את ההתקפה הנגיפית. נתאר כיצד פועל המנגנון החיסוני הנרכש של החיידקים, אך יש לציין שזהו תיאור חלקי – הידע שלנו עדיין אינו שלם.

מסתבר שכמו מבנה אתר הקריספר, כך גם הרצפים שנבחרים מתוך ה-DNA של הפאג' כדי לשמש כמרווחים אינם אקראיים. אם מנתחים את הרצף של המרווחים ומשווים אותם לרצף של הפאג'ים שמהם נגזרו, מתגלה כי רצפי המרווחים על הפאג' מופיעים תמיד לפני רצפים מיוחדים המכונים "מוטיבים הסמוכים לקדם מרווחים". כמו הרצפים המובילים והרצפים החוזרים, גם הרצף של מוטיבים אלה משתנה מאתר קריספר אחד למשנהו. עובדה זו מרמזת כי הבחירה של המוטיבים, ובעקבותיה הבחירה של רצפי המרווחים, נעשית על ידי חלבונים ייחודיים לכל אתר ואתר. המועמדים הטבעיים לכך הם כמובן חלבוני הקאס. כיום משערים כי שניים מחלבוני הקאס משתתפים בתהליך הזיהוי והאינטגרציה של ה-DNA הנגיפי לתוך ה-DNA החיידקי. קיומם של מערכות קריספר מקבילות בחלק מהחיידקים, מרמזות כי הם פועלות בצורה בלתי תלויה אחת בשנייה.

ככל הנראה, הרצף המוביל משמש כמקדם (Promoter) לתעתוק של חלק נרחב – ולעתים אף של כל – אזור הקריספר למולקולת RNA ארוכה. בשלב הבא נחתך ה-RNA לפיסות קטנות של כמה עשרות נוקליאוטידים, המכונות crRNA, בעזרת קומפלקס של חלבוני קאס. הקומפלקס מכונה קאסקֵיד (Cascade – CRISPR associated complex for antiviral defense). לשם עיבוד ה-RNA עושה הקאסקֵיד שימוש ביכולת של חלק מהחלבונים המרכיבים אותו לפעול כאנזימים החותכים חומצות גרעין. פיסת ה-crRNA המתקבלת מכילה רצף של כשמונה נוקליאוטידים מתוך רצף חוזר אחד, את הרצף המתועתק מהמרווח המתאים, ולבסוף חלק של הרצף המתועתק של הרצף החוזר הבא אחריו (איור 3).
איור 3: פעולתה של מערכת הקריספר-קאס. בשלב הראשון המערכת מזהה DNA זר, מסנתזת מִקטע המתאים ל-DNA  זה, ומכניסה אותו בעזרת חלבוני קאס לתוך אתר הקריספר יחד עם רצף חוזר מתאים. בשלב השני ה-DNA  מתועתק מתוך אתר הקריספר ל-RNA  שעבר עיבוד בעזרת הקאסקֵיד - שהוא קומפלקס של חלבוני קאס - לפיסת crRNA המכילה את הרצף מהמרווח שצמוד ל-RNA  שנגזר מהרצפים החוזרים משני צדיו. בשלב השלישי, ה-crRNA  ביחד עם הקאסקיד וחלבוני קאס מזהה את התקיפה החוזרת של הפאג', נצמד ל-DNA שלו ומוביל להרס ה-DNA הנגיפי                   
                    

קיומה של מולקולת crRNA היא תנאי הכרחי ליכולתה של מערכת הקריספר להעניק לחיידק עמידות. הוצע שה-crRNA   פועל על ידי היצמדות ל-RNA השליח של הפאג', דבר המוביל להריסת ה-RNA הנגיפי ומונע את יצירת החלבונים הדרושים לפאג' לשם שכפולו. אולם למעשה, מערכת הקריספר פועלת על ה-DNA של הפאג' תוך שהיא נעזרת ב-crRNA בקאסקיד. יחד הם מחפשים ב-DNA של הנגיף את האזור המשלים ל-crRNA. כאשר מזוהה אזור זה, ה-crRNA מסיט את הקשרים בין שני גדילי ה-DNA של הפאג' ונצמד במקום אחד מהגדילים לגדיל ה-DNA המשלים לזה של ה-crRNA. הקומפלקס שנוצר בין ה-crRNA ל-DNA הנגיפי ולחלבוני הקאסקיד מאפשר לקאסקיד לחתוך את ה-DNA של הפאג', מה שמוביל להרס כולל של ה-DNA הנגיפי.

אך כאן צצה ועולה הבעיה שדיברנו עליה קודם: אותו רצף הנמצא ב-DNA של הפאג', נמצא גם באתר הקריספר. לכן החיידק נמצא בסכנה שמערכת הקריספר תזהה בטעות את הכרומוזום של החיידק כ-DNA נגיפי, תחתוך אותו ותביא להרס המטען הגנטי שלו עצמו. כאן מתגלה היופי של עקרונות העיצוב של מנגנון הקריספר: כאמור, משני צדי אזור ה-crRNA המשלים לרצף של ה-DNA הנגיפי ממוקמים אזורים שנגזרו מהרצפים החוזרים של אתר הקריספר. כך, אם מזהה ה-crRNA את אתר הקריספר כאתר אפשרי לחיתוך, ייצמדו לרצף המתאים של ה-DNA של החיידק גם שמונת הנוקליאוטידים הראשונים של ה-crRNA שנגזרו מהרצף החוזר. מבנה זה שונה במידה מספקת מהמבנה המוביל לחיתוך ה-DNA של הפאג' ולכן חלבוני הקאסקיד אינם יכולים לחתוך את הכרומוזום של החיידק. כך משיג החיידק חסינות כנגד הפאג' מבלי לסכן את עצמו.


קבוצת הפאג'ים (the phage group) היא שמה של רשת מדענים שהתאספו סביב זוכה פרס הנובל מאקס דֶלבּרוּק (Delbrück) במחצית השנייה של המאה ה-20. הקבוצה זכתה לשמה בשל השימוש שעשו בפאג'ים ככלי מחקר עיקרי. קבוצה זו הרימה תרומה  נכבדת להתפתחותה של הביולוגיה המולקולרית.

השלכותיה של מערכת הקריספר-קאס
נמצא שיש קשר בין מערכת הקריספר לבין יכולתם של חיידקים לגרום למחלות זיהומיות. קבוצה של חוקרים מאוניברסיטת הארוורד חקרה את קשר זה בחיידק Enterococcus faecalis, הנמצא באופן טבעי במערכת העיכול שלנו. משנות השמונים של המאה שעברה התפתחו זנים חדשים של החיידק, שמהווים את אחד הגורמים המובילים למחלות זיהומיות שמקורן בבתי חולים. במקרים רבים הופכים זיהומים אלה לזיהומים מסכני חיים. זנים אלה מהווים סכנה בריאותית כה חמורה מכיוון שהם רכשו עמידות כנגד מספר רב של תכשירי אנטיביוטיקה, דבר המקשה על היכולת לטפל בהם. בדרך כלל עמידות לאנטיביוטיקה נרכשת על ידי חיידקים בעזרת גורמים כגון פלסמידים הנודדים מחיידק לחיידק (וראו עמידות פרהיסטורית, גל חיימוביץ). מתוך השוואת ה-DNA של הזנים הפתוגנים לאלה שאינם גורמים מחלות, גילו החוקרים כי מקור רבע מה-DNA של הזנים הפתוגנים הוא ב-DNA נודד. בנוסף לעמידות כנגד האנטיביוטיקה, הכילו חלקים אלה של ה-DNA גם גנים רבים המגבירים את הפתוגניות של החיידק.
כאמור, בנוסף להגנה שמעניקה מערכת הקריספר נגד פאג'ים, היא נועדה לטפל באלמנטים נודדים של DNA ובשכיחות שהם עוברים אינטגרציה לתוך ה-DNA של החיידק. ואכן, החוקרים גילו כי הזנים שאחראים לזיהומים בבתי החולים חסרים מערכת קריספר פעילה, בעוד אלה הנמצאים באופן טבעי במערכת העיכול שלנו הם בעלי מערכת כזו. לפיכך, ובהסתמך על "אילן היוחסין" של הזנים הפתוגניים, טוענים החוקרים כי שימוש יתר באנטיביוטיקה בבתי חולים בשנות השבעים הוביל למחיקה של מערכת הקריספר הפעילה מחיידקי Enterococcus faecalis מסוימים, דבר שאִפשר להם לרכוש עמידות למספר רב של אנטיביוטיקות. אם זה נכון, אנו יכולים ללמוד מכך על המשמעויות של שימוש יתר באנטיביוטיקה, ועל חשיבותה של המערכת החיסונית של החיידקים לבריאותנו.


חיידקים נצפו לראשונה על ידי אבי תורת המיקרוביולוגיה אנטוני ואן לוונהוק (Van Leeuwenhoek) באמצע המאה ה=17 בעיר דלפט שבהולנד, באמצעות מיקרוסקופ פשוט (בעל עדשה אחת) שבנה בעצמו. ואן לוונהוק אף ליטש את העדשות בעצמו, והגיע לאיכות כה גבוהה שנדרשו 100 שנים נוספות עד ששוחזרה איכות עדשותיו.  

השלכה הנוספת של מערכת הקריספר מעוררת מחשבה מבחינה תיאורטית. לפני שנתיים חגג העולם 150 שנה לפרסום הספר "מוצא המינים", שציין את הולדתה של התיאוריה הדרוויניסטית, התיאוריה האבולוציונית השלטת עד היום. כידוע, דרווין לא היה הראשון שהציע שהמינים קשורים זה לזה בצורה אבולוציונית. 50 שנה קודם לכן טען זאת זאן-בטיסט דה למארק (Jean Baptiste de la Marck). ההבדל בין התיאוריה של למארק לבין זו של דרווין הוא שלמארק טען שתכונות שנרכשות במהלך חייהם של האורגניזמים בצורה הגורמת להם להפוך למותאמים יותר לסביבה, מועברות בתורשה לצאצאיהם ומהוות את הבסיס לשיפורם של המינים-הביולוגיים לאורך ההיסטוריה. התיאוריה של למארק נדחתה על ידי הקהילייה המדעית. במקומה התקבלה הצעתו של דרווין, שעל פיה השונוּת בין יצורים מאותו מין-ביולוגי אינה פרי של שכלול מכוון של תכונותיהם, אלא נוצרת בצורה אקראית. אחת הסיבות המרכזיות שהתיאוריה של למארק אינה יכולה לעבוד היא שתאי המין אינם מושפעים מהדרך בה האורגניזמים חיים את חייהם. כך לדוגמה אם אחד מההורים חלה בשחפת ופיתח כנגדה נוגדן, צאצאיו לא יהיו מחוסנים, שכן ה-DNA המקוֹדד את יצירת הנוגדנים אינו עובר לתאי הרבייה. ואולם, לחיידקים אין תאי רבייה – והם מעבירים לצאצאיהם את ה-DNA היחיד שיש להם. כלומר, כל שינוי ב-DNA שהתרחש במהלך חייהם יועבר לצאצאיהם. בדרך כלל שינויים אלה הם שינויים אקראיים שמתאימים לתיאוריה הדרוויניסטית. אבל במקרה של מערכת הקריספר, השינוי ב-DNA איננו אקראי כלל וכלל. זהו שינוי מכוון, שאותו מבצע החיידק בצורה מבוקרת. יתר על כן, השינוי ב-DNA החיידקי בעקבות החשיפה לפאג' נותן לחיידק יתרון הישרדותי– עמידות כנגד נגיפים – יתרון אותו הוא מעביר לצאצאיו. 

לאור זאת מציעים החוקרים יורי וולף (Wolf) ואוגניה קוונין (Koonin) ממכון המחקר הלאומי לבריאות של ארצות-הברית, לראות במערכת הקריספר מנגנון אבולוציוני למארקיאני, המתקיים במקביל למנגנונים הדרוויניסטים, שאחראיים לרובה של האבולוציה. לתפישה כזאת, אם תתקבל, יכולות להיות השלכות מרחיקות לכת על ההבנה שלנו את ההיסטוריה האבולוציונית, ובעיקר על ההבנה של האבולוציה המוקדמת, שהתרחשה בסמוך להיווצרות החיים.

לקריאה נוספת:

Philippe Horvath and Rodolphe Barrangou, CRISPR/Cas, the Immune System of Bacteria and Archaea Science, 327, 167-170 (2010).

Fedor V. Karginov and Gregory J. Hannon, The CRISPR System: Small RNA-Guided Defense in Bacteria and Archaea, Molecular Cell, 37, 7-19 (2009).

Eugene V. Koonin and Yuri I. Wolf, Is Evolution Darwinian or/and Lamarckian?, Biology Direct, 4 (2009)

Simon J. Labrie, Julie E. Samson and Sylvain Moineau, Bacteriophage resistance mechanisms, Nature Reviews Microbiology, 8, 317-327 (2010).

Kelli L. Palmer and Michael S. Gilmore, Multidrug-Resistant Enterococci Lack CRISPR-cas, mBio, 1 (4), 1-10 (2010).


ירון כספי הוא בעל תואר דוקטור ממכון ויצמן למדע. מבצע בימים אלה מחקר בתר דוקטורנטי בביופיזיקה של חיידקים במחלקה למדעי הביו-ננו באוניברסיטת דלפט בהולנד.

פורסם בגליליאו 163, מרץ 2012

יום שישי, 10 בפברואר 2012

האיש שמיליונים חייבים לו את חייהם - 100 שנים למותו של ג`וזף ליסטר - איתי נבו


כשאנו זקוקים לניתוח, או אפילו לפעולה רפואית פשוטה יותר, נראה לנו כיום מובן מאליו כי הרופא ירחץ היטב את ידיו, יעטה כפפות סטריליות, יחטא היטב את מקום הטיפול ויישתמש רק במכשירים שעוקרו בחום או בקרינה. ואולם, לפני כ-150 שנה, צעדי המניעה האלה לא היו מקובלים וחולים רבים שנותחו בהצלחה, מתו כעבור זמן קצר בייסורים מזיהומים קשים. האחראי העיקרי לשינוי הזה ולהצלת חייהם של מיליוני בני אדם הוא הרופא האנגלי ג'וזף ליסטר (Lister).

כימיה רפואית
ליסטר נולד ב-1827 למשפחה אדוקה של נוצרים קווייקרים, אבל גם בעלת מסורת מדעית. אביו היה חוקר ומומחה בתחום המיקרוסקופיה. מגיל צעיר הוא התעניין במדע, ואף על פי שלמד אמנות תקופה קצרה, עד מהרה התמסר ללימודי הרפואה והתמחה בכירורגיה. בגיל 27 מונה לעוזרו של המנתח ג'יימס סיים (Syme) מאוניברסיטת אדינבורו, התיידד עמו ועם משפחתו וכעבור זמן קצר נשא לאשה את בתו של סיים, אגנס. גם היא גילתה עניין רב במדע וברפואה, והייתה שותפה מלאה בעבודתו של בעלה. ליסטר קיבל משרת פרופסור באוניברסיטת גלזגו, שם נתקל במאמר של הכימאי הצרפתי לואי פסטר (Pasteur), מחלוצי המיקרוביולוגיה. פסטר כתב כי ריקבון ותסיסה המזוהים עם נמק של רקמה עלולים להתרחש בהעדר חמצן אם הגורמים לכך הם חיידקים או מיקרו-אורגניזמים. הוא גם ציין כי אפשר להתגבר על התופעה באמצעות סינון, חימום או חשיפה לחומרים כימיים. ליסטר, שלא רצה לחמם או לסנן את מטופליו, החליט לנסות את השיטה השלישית, ולחפש חומר כימי שיקטול חיידקים.

ג'וזף ליסטר, 1896
צילום: Robert Alexander Bickersteth
Wikimedia commons


שינויים בהרגלי התמותה
באותה תקופה התברר כי לחומצה הקרבולית (החומר המכונה כיום "פנול"- phenol) יש פוטנציאל לחיטוי, ואף שאיש לא הבין כיצד היא פועלת, התחילו להשתמש בה להגנה על משלוחי עץ מפני ריקבון. ליסטר ריסס את החומצה על פני מכשירי הניתוח שלו, וגילה כי הדבר מפחית במידה ניכרת את שיעור התפתחותם של נמקים אצל חולים שניתח. בשלב הבא הצמיד בד טבול בחומצה קרבולית לפצעיו של ילד שכרכרה דרסה אותו ושברה את רגלו. הוא החליף את הבד בחדש כל כמה ימים, ונדהם שכעבור כמה שבועות התאחו העצמות והילד שב ללכת, בלי שנפגע כלל מזיהום. ליסטר פרסם את ממצאיו בכתב העת הרפואי Lancet ב-1867 ואחר כך הוזמן להציגם לפני החברה הרפואית הבריטית. הוא המשיך לפתח עוד ועוד את עקרונות החיטוי הרפואי, ובין השאר הורה למנתחים שעבדו אמו לעטות כפפות נקיות טבולות בחומצה קרבולית, לחטא את אוויר חדר הניתוח בריסוס חומצה ולהפסיק להשתמש במכשירים רפואיים בעלי ידיות מחומר סופג, שעלול להיות כר לזיהומים. עד מהרה הפכו השיטות האלה מקובלות ברוב העולם. בשנים הבאות, ככל שהתברר הקשר בין חיידקים למחלות, גם הבינו מדוע השיטות שלו מועילות.

מגדולי האומה
ליסטר היה גם מנתח מעולה, ובין השאר היה מחלוצי ניתוחי המוח בבריטניה, פיתח שיטה חדשנים לניתוחי הברכיים באמצעות חוט ברזל ושכלל את השיטה המקובלת לכריתת שד. ואולם, הוא זכור בעיקר בזכות תרומתו להפחתת שיעורי התמותה של חולים הודות לחיטוי שהנהיג, ואף קיבל בשל כך תואר ברון.

ב-1892 הלכה לעולמה אגנס ליסטר, ובעלה התקשה להתגבר על האבידה. הוא חדל כמעט לגמרי מעבודה, וזמן לא רב לאחר מכן לקה באירוע מוחי. הוא הלך לעולמו ב-10.2.1912, וטקס האשכבה שלו התקיים בכנסיית ווסטמינסטר, מקום מנוחתם של רבים מגדולי האומה הבריטית. ליסטר זכה לאותות כבוד והוקרה רבים ובין השאר נקרא על שמו אחד ההרים הגבוהים באנטארקטיקה. גם החיידק ליסטריה (הגורם לזיהומי מזון קשים) נקרא על שמו לאחר מותו, ואפילו מי שטיפת הפה "ליסטרין" קרויים על שמו של אבי החיטוי הרפואי.


פורסם במקור בבלוג המאור הקטן של רשת  ב וגם ב"תפוז בלוגים"

יום חמישי, 22 בדצמבר 2011

מדוע נגיף מחסל את המאכסן שלו? - מרית סלוין


מערכת היחסים המרתקת בין נגיף ובין המאכסן שלו, שהוא תא חי, מעלה שאלות שלא תמיד זוכות למענה הגיוני. לדוגמה: מדוע נגיף מחסל את המאכסן שלו, שהרי בלא אכסניה אין לו חיים? מדוע התא לא מצליח להתגונן? איר ״רכשו" הנגיפים הזעירים מהמאכסן שלהם במהלך האבולוציה גנים ו״ניכסו״ אותם לצורך מלחמה בו? מעבר לכך מתברר שחקר היחסים ההדדיים הללו פותח פתח להכרת ״פרטנרים״ חדשים, שממלאים תפקידים לא רק במערכת נגיף־תא, אלא גם בתחומים אחרים, כמו בהתמרה סרטנית. פרופ׳ רונית שריד מהפקולטה למדעי החיים באוניברסיטת בר־אילן חוקרת מקצת מהיחסים הללו.

נגיפים הם חלקיקים זעירים המורכבים מחומר גנטי שארוז במעטפה חלבונית. לשם התרבותם הם זקוקים למאכסן - תאים של יצורים חיים - ובלעדיו הם לא שורדים. נגיף חופשי לא מגלה שום פעילות חיים, אבל לאחר שהוא חודר לתא המאכסן הוא פעיל מאוד. הוא משתלט על מנגנונים תאיים ומפעיל אותם לצרכיו, תוך כדי ניצול משאבי התא באופן המוביל במקרים רבים למות התא. נשאלת השאלה מדוע הנגיף ממית במקרים רבים את התא אם הוא זקוק לו לצורך קיומו? מכאן עולה שאלה נוספת: האם נגיף שאינו ממית את התא המודבק ייחשב מותאם יותר ובעל שרידות גבוהה יותר?

נגיפי HHV-8 במיקרוסקופ אלקטרונים
CDC
/ Cynthia Goldsmith and Jodi Black

ביטויי ההדבקח בנגיף אלים

רונית שריד חוקרת את נגיף סרקומת קאפושי - נגיף התוקף באלימות תוך כדי גרימת מחלה סרטנית בחולי איידס, מושתלי איברים ובני אדם בעלי מערכת חיסון פגועה. זהו נגיף שנמנה עם משפחת נגיפי ההרפס, ושבמרבית המקרים מדביק ונותר בגוף בלא סימני מחלה. המחלה מתפרצת בדרך כלל במקרים של כשל חיסוני או באוכלוסייה מבוגרת. אצל חולי איידס היא יכולה להתבטא בחומרה ולגרום למוות. ”המופעים המגוונים של התבטאות ההדבקה בנגיף בבני האדב מעניינת מאוד. במרבית המקרים אין תסמינים כלל, ואם הם קיימים הם משתנים: אדם לאדם. הסיבות להתפרצותה של המחלה, גורמי הסיכון השונים ודרכי העברת הנגיף - כל אלה סקרנו אותי ובמקביל למחקר במישור הקליני והאפידמיולוגי פניתי למחקר מולקולרי, המתמקד במערכת היחסים נגיף־תא במטרה להבין משהו ממערכת היחסים בין הנגיף לתא המאכסן”, מספרת שריד.

כשנגיף חודר לגוף הוא מתביית על תא מטרה, נקשר לקולטן הממוקם על ממברנת התא, חודר לתוך התא, מתערטל מהמעספה החלבונית שלו ונשאר תוך כדי שחרור החומר הגנטי. מהחומר הגנטי מתבטאים הגנים הנגיפיים המקודדים ליצירת חלבונים שמשרתים בדרך כלל את הנגיף, ביניהם כאלה המכשירים את התא להתרבות הנגיף ומדכאים את תגובות התא נגדו. חלבונים אחרים מסייעים לשכפיל הנגיף תוך כדי שימוש באבני הבניין של התא וליצירת חלבוני המעטפת המשתתפים בהרכבתו של החומר הגנטי של הנגיף ובאריזתו מסייעים לשחרור הנגיפים מן התא. מהלכים אלה פוגעים בתא ומובילים ברוב המקרים לחיסולו. הנגיף, למעשה, מנכס לצרכיו את מנגנוני החיים של התא והתא מצדו מנסה להתגונן. הוא מפעיל תוכנית חיסול במטרה לפגוע בהתרבות הנגיף, אבל הנגיפים משתיקים את תהליכי ההתגוננות של התא ועושים בו כבתוך שלהם. עם זאת לא כל הדבקה נגיפית מסתיימת במוות של התא המודבק או המאכסן. השילוב של תגובת התא עם המערכת החיסונית מקנים לנתקפים בנגיפים יכולת להגביל את התפשטות ההדבקה הנגיפית ולשרוד.

שריד עוסקת בחקר הגורמים המשתתפים בתהליכים האלה, כשמודל המחקר שלה הוא נגיף סרקומת קאפושי. ״הגנום של נגיף סרקומת קאפושי הוא גדול יחסית ומכיל כ־90 גנים, חלקם גנים שהנגיף ׳רכש׳ במהלך האבולוציה מהתאים שאכסנו אותו׳׳, מסבירה שריד. ״אנחנו מתמקדים בגן אחד מאלה, המכונה 2-Bcl, המקודד ליצירת חלבון שמשתתף בבקרת תהליכי מוות של התא.׳׳ כשתאים מסיימים את מחזור חייהם או מזהים שיבושים בפעילות התא הם עשויים להפעיל ״תוכנת התאבדות" שטבועה בגנום שלהם ומביאה למותם - תהליך המכונה אפופטוזיס. תהליך התאבדות מסוג זה מושרה גם במהלך הידבקות בנגיף, ותפקידו לעכב את התרבות הנגיף בגוף: התאים המודבקים מומתים וכך עשויה להצטמצם הפצת הנגיף לתאים נוספים. החלבון 2-Bcl הנגיפי משתתף בתאים בבקרת תהליכי ההתאבדות של תאים והוא מעכב את תהליכי המוות תוך כדי עקיפת מסלולי הבקרה השונים של התא.

פרופ' רונית שריד
צילום: אוניברסיטת בר-אילן

יחסי גומלין בין חלבוני הנגיף לחלבוני התא 

״בעיקרון הנגיף 'מפעיל' את החלבון 2-Bcl בתאים המודבקים ׳במטרה׳ שהתא יחיה יותר, והוא מצדו יוכל להתרבות ולשרוד בתא שמאכסן אותו. התחלנו לבדוק איך קורה התהליך הזה ובחנו עם אילו חלבונים של התא מגיב החלבון 2-Bcl של הנגיף״, ממשיכה שריד. ׳׳זיהינו חלבון תאי בשם 1-P1CT שמגיב איתו והתגובה הזאת דווקא מנטרלת את פעילות עיכוב המוות של התא שמשרה 2-Bcl הנגיפי. יחד עם זאת, מצאנו שבמקביל התגובה של החלבון 2-Bcl עם 1-PICT מקנה לו תפקיד חדש: הוא מעכב את חלוקת התא. אנחנו יודעים שתא בשלבי חלוקה הרבה יותר רגיש לאותות של מוות, ולכן עיכוב חלוקת התא מקנה עמידות בפני מוות ואף מאפשר את גיוס אבני הבניין של התא לשכפול הנגיף ולא לשכפול התא. לכן נראה שהחלבון 1-PICT ממלא תפקיד כפול במהלך ההדבקה: הוא ממתן את הפעילות מעכבת המוות של 2-Bcl, ומצד שני מקנה לו תפקיד נוסף שאולי חיוני במהלך ההדבקה.״

חקר יחסי הגומלין בין חלבוני נגיף לחלבונים תאיים הוא בעל חשיבות בהבנת תהליך ההדבקה ופיתוח עתידי של אמצעים לבלימתו. יותר מכך: מתברר שבאמצעות החלבונים הנגיפיים מתגלים ממצאים מפתיעים על תפקיד החלבונים התאיים. לדוגמה: ממצאים ראשוניים מצביעים על מעורבותו של החלבון התאי 1-P1CT בתהליכי ההתפתחות של גידולים סרטניים. לפיכך, חקר היחסים בין Bcl-2 ל-PICT-1 עשוי לסייע לא רק בהבנת מנגנון הפעולה של 2-Bcl במהלך ההדבקה בנגיף, אלא אף לפיענוח תפקידיו של החלבון 1-P1CT בתהליכי חיים שונים.

פורסם ב"גליליאו" 160, דצמבר 2011

יום שלישי, 20 בדצמבר 2011

קרוב לצלחת - 90 שנה למותו של ממציא צלחת הפטרי - איתי נבו



גידול חיידקים במעבדה הוא היום עניין של מה-בכך. צריך לאבחן זיהום חיידקי? נוטלים דגימה קטנה מהחולה (למשל משטח גרון), מניחים על מצע גידול וכשהחיידקים מתרבים אפשר לזהותם ולהתאים טיפול לחולה. רוצים לבדוק את יעילותו של חומר אנטיביוטי? מטפטפים ממנו על תרבית החיידקים, ורואים בקלות היכן הם מתרבים והיכן לא. צריכים לבדוק רמות זיהום במים? כמה טיפות על צלוחית הגידול יגלו עד מהרה את התשובה. ואולם, מה שנעשה דרך קבע מדי יום ביומו במאות אלפי מעבדות ברחבי העולם, ממש לא היה מובן מאליו לפני פחות מ-150 שנה.

מנוזל למוצק

כמו פריצות דרך רבות בתחום המיקרוביולוגיה, גם שיטת הגידול פותחה במעבדתו של הרופא הגרמני רוברט קוך (Koch, 1910 - 1843). קוך היה אחד מחלוצי המחקר במחלות זיהומיות ומיליונים חבים לו את חייהם בזכות מחקריו בשחפת, בכולרה, בחיידקי גחלת ובמחלות רבות אחרות. עם עובדיו, עמיתיו ותלמידיו פיתח קוך רבות מהטכניקות המשמשות מדענים עד היום בגידול חיידקים ובאבחון מחלות. בין השאר קוך היה מהראשונים שגידלו חיידקים בתרביות, בדרך כלל בבקבוק המכילה תמיסת מזון עשירה, שבה יכלו החיידקים להתרבות ולשגשג. ב-1881 המציאה עובדת של קוך, פאני הסה (Hesse) פטנט חדש: גידול חיידקים על מצע מוצק. היא השתמשה באגאר (Agar) חומר עשיר בסוכר המופק מאצות, ומרקמו דומה לג'ל מוצק. המצע הסוכרי הזה נמזג לבקבוקים או לצלוחיות, שם שימש משטח נוח להתפתחות החיידקים. לעיתים הוא גם נמרח על לוחיות זכוכית, דומות לאלה המשמשות בהתבוננות במיקרוסקופ. השימוש במצע מוצק איפשר לחוקרים הפרדה קלה יותר בין אוכלוסיות חיידקים, וטיפול מדוייק יותר בחיידקים (אפשר להפריד בקלות בין מושבות, בניגוד לתרבית נוזלית).

 Julius Richard Petri - ~1888

הצלחת המוצלחת

כעבור שש שנים, ב-1887, הגה עובד אחר אצל קוך, הרופא הצבאי יוליוס ריכארד פטרי (Petri) רעיון גאוני ופשוט בתכלית. לגדל את החיידקים על מצא האגאר המוצק בתוך צלוחית עגולה, ועליה מכסה גדול במעט מן הצלוחית עצמה. הפיתוח החדש צמצם מאוד את מספר הזיהומים בתרביות (משום שהיה מכסה נפרד לכל צלוחית). אבל גם הקל על הגישה לכל מושבה ואיפשר להתבונן בצלוחיות בלי לפתוח אותן. כמו כן היא האריכה בכמה ימים את משך החיים של החיידקים בתרבית. עד מהרה הפך השימוש בצלוחיות הפשוטות לתקן מקובל בכל המעבדות, והן מוכרות כיום בשם של ממציאן – צלחות פטרי. בימיו של פטרי נהגו להשתמש בצלוחיות זכוכית, למזוג לתוכן את חומר המצע הרותח ולחכות שיתקרר. כיום אפשר לקנות צלוחיות פלסטיק מוכנות באריזה סטרילית, עם מצעי גידול שונים. צלוחיות הפלסטיק מתוכננות כך שחריצים זעירים בין המכסה לצלחת יאפשרו זרימת אוויר עם סיכוי מזערי לזיהום. בליטות במכסה ובצלוחית מאפשרות לערום מספר רב של צלחות, אך כאמור – כמעט אין הבדל מהותי בין הצלוחיות של ימינו לאלה שהמציא פטרי לפני כ-125 שנה. ריכארד יוליוס פטרי עסק שנים רבות בחקר מחלות, פרסם כ-150 מאמרים מדעיים בתחום המיקריוביולגיה וההיגיינה, והמציא עוד כמה המצאות חשובות (כמו מסנן לחיטוי תרביות), אך שמו ייקשר כנראה לעד לצלוחיות הפשוטות שהמציא. השבוע לפני 90 שנה, ב-20.12.1921, הלך פטרי לעולמו בגרמניה, מותיר לעולם המדע את אחד מכלי העבודה הבסיסיים ביותר שלו.



פורסם במקור בבלוג המאור הקטן של רשת  ב וגם ב"תפוז בלוגים"

יום ראשון, 11 בדצמבר 2011

שמרי אפייה, גרסה 2.0 - גל חיימוביץ


על יצירת כרומוזום סינתטי בשמרים

שמרים תחת מיקרוסקופ
Masur, Wikimedia commons

ביולוגיה סינתטית היא תחום חדש (מאוד) בביולוגיה, שבו חוקרים לומדים כיצד להנדס מחדש מערכות ביולוגיות קיימות לכדי יצירת חלבונים חדשים, מסלולים מטבוליים חדשים, ואף אורגניזמים חדשים (וראו: ירון כספי, "ואלה תולדות הביולוגיה הסינתטית", "גליליאו" 158, אוקטובר 2011). תחום זה עלה לכותרות העיתונים גם בעקבות עבודתו של קרייג ונטר (Venter), שיצר כרומוזום חיידקי שלם סינתטי. למעשה, רוב המחקר בביולוגיה סינתטית מתמקד (לפחות בשלב זה) ביצורים פרוקריוטיים, מכיוון שלהם יש כרומוזום יחיד, וקטן יחסית. קבוצתו של ג'ף בואק (Boeke) מאוניברסיטת ג'ונס הופקינס פרסמה בכתב-העת Nature (ספטמבר 2011) עבודה ראשונה על כרומוזום איקריוטי סינתטי.

לשמר האפיה יש 16 כרומוזומים, כל אחד בעל שתי זרועות וביניהן צֶנטרומֶר; כל אחד מהכרומוזומים הוא באורך של כמה מאות אלפי עד מיליוני נוקלאוטידים. בואק ועמיתיו בחרו לייצר באופן סינתטי רק את הזרוע הקצרה של כרומוזום 9 (כ-90,000 נוקלאוטידים; הזרוע הקצרה ביותר בגנום השמרי), המהווה כ-20% מאורך כרומוזום 9 כולו, ומקטע של כ-30,000 נוקלאוטידים מקצה הזרוע הארוכה של כרומוזום 6 (מקטע זה הוא כ-16% מאורך הכרומוזום כולו).

החוקרים הגדירו שלושה עקרונות מנחים ליצירת הכרומוזומים הסינתטיים. עיקרון ראשון:  הזן החדש שייווצר צריך להיות בעל פנוטיפ הדומה ככל האפשר לזן המקור. עיקרון שני: יש למחוק אזורים שיציבותם הגנטית נמוכה. עיקרון שלישי: הכרומוזום הסינתטי צריך לאפשר לחוקרים לבצע עליו בדיקות ומניפולציות גנטיות בקלות יחסית כדי להקל על מחקרים עתידיים.

זרועות הכרומוזומים הסינתטיים (שהחליפו את זרועות הכרומוזומים הטבעיים) מכילות את כל הגנים וקטעי ה-DNA היציבים המופיעים בכרומוזום הטבעי, ובאותו סדר. בהתאם לעיקרון הראשון שקבעו לעצמם החוקרים, השינויים שנעשו בכרומוזום הסינתטי (ראו בהמשך) לא השפיעו על יכולת הגדילה או על ההישרדות של התאים בתנאים שנבדקו במעבדה, יחסית לזן המקור.

לעומת האזורים היציבים, מהכרומוזום הוחסרו מִקטעי DNA לא יציבים דוגמת רטרוטרנספוזונים ורצפי RNA מעביר (tRNA): רטרוטרנספוזונים הם רצפי DNA שמקורם כנראה בנגיפים שהשתלבו בגנום. אלו רצפים שמיקומם לא יציב והם יכולים "לקפוץ" בין אזורים שונים בגנום. רצפים אלו נחשבים כלא-חיוניים בשמר. בשמר יש 275 גנים למולקולות tRNA, המקודדים יצירת 42 סוגי tRNA שונים (כלומר כמה גנים לכל סוג). גנים אלו ידועים כמקנים אי יציבות בגנום, כלומר מעלים את תדירות השבירה והשחלוף של כרומוזומים במהלך הכפלת ה-DNA. על כן, בהתאם לעיקרון השני, רטרוטרנספוזונים וגנים מקודדי tRNA הוסרו מהכרומוזום הסינתטי.

העיקרון השלישי הוא המעניין והחשוב ביותר בפיתוח הכרומוזומים הסינתטיים. שלושה שינויים עיקריים נעשו כדי לממש את העיקרון הזה: האחד, הוספת ברקוד גנטי, רצפים קצרים יחודיים שנמצאים רק בכרומוזום הסינתטי ולא במקורי, שבעזרתם אפשר להבחין בקלות בין DNA מהמקור הטבעי או המלאכותי. השני, החלפה של קודוני סיום תרגום: הקוד הגנטי מכיל 61 קודונים המקודדים הצבת 20 חומצות אמינו, ושלושה קודונים המקודדים סיום תהליך תרגום החלבון (כל קודון הוא אחד מ-64 צירופים אפשריים של שלושה מארבעת הנוקלאוטידים). ביצירת הכרומוזום הסינתטי הוחלף אחד הקודונים לסיום תרגום (TAG) בקודון סיום אחר (TAA) בשיטתיות בכל הגנים, כך שעתה כל הגנים על גבי הכרומוזום הסינתטי מכילים רק אחד משני קודוני הסיום האחרים:TAA  או TGA. עתה, הקודון TAG יכול להיות בסיס להנדסת מערכת קידוד חדשה (tRNA מלאכותי שיכיר קודון זה, וחלבון שישדך אותו tRNA עם חומצת אמינו מספר 21). מערכת כזו יכולה להיות בסיס ליצירת חלבונים חדשים לחלוטין, שאינם נמצאים בטבע, או כמנגנון ליצירת מין-ביולוגי חדש שאינו יכול להתרבות ברבייה מינית עם המין-הביולוגי המקורי.

השינוי השלישי הוא שלכרומוזומים הסינתטיים הוחדרו רצפים מיוחדים (LoxP) לפני כל גן ואחריו. כמו כן, הכניסו לשמרים גן המקודד יצירת אנזים (Cre), המבצע שחלוף (רקומבינציה) בין רצפים של LoxP. הגן המקודד את יצירת האנזים נתון תחת בקרה של הורמונים אסטרוגנים (שאינם קיימים בשמרים). לפיכך האנזים ייווצר רק כשיוסיפו אסטרוגנים למצע הגידול. היתרון של מערכת זו הוא שבעזרתה אפשר לבחון שאלות הנוגעות ליציבות הגנום, לחשיבות אותם גנים בתנאי גידול שונים או לתהליכים שונים בתא, לסדר של הגנים על גבי הכרומוזום ועוד.

ומה צופן העתיד?
על פי התחלה מצליחה זו, לא מן הנמנע שכבר בעשור הקרוב יוחלף כלל הגנום השמרי בכרומוזומים סינתטיים (ויש לציין שבאופן יחסי קל לבצע בשמרים שינויים גנטיים, כמו החלפת הכרומוזומים, לעומת תאים ממקור רב-תאי כמו תולעת, זבוב או עכבר). אפשר יהיה להחליף את הקוד הגנטי בכללותו (או להוסיף עליו, עד 43 חומצות אמינו שונות בנוסף ל-20 הקיימות) שייצרו חלבונים מלאכותיים בעלי תכונות שמעולם לא נראו בטבע לפני כן. חלבונים אלו עשויים לשמש בסיס לרפואת העתיד.

ואם נלך לעתיד רחוק יותר – הצלחות של מערכות מודל כמו מערכות השמרים יוכלו לשמש בסיס ליצירת אורגניזמים רב-תאיים מלאכותיים שישמשו את האדם למזון, כחיות מחמד, ליישוב אנושי בחלל ועוד. ואולי, עם כל ההשלכות המוסריות, גם ליצירת אדם מלאכותי.

לקריאה נוספת

דרור בר-ניר, "הגנום שלך – זה טבעי?" "גליליאו" 143.

פורסם ב"גליליאו" 160, דצמבר 2011